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[http://info.fujita-hu.ac.jp/~hirasawa/manual/manual.html 染色マニュアル]←めちゃ、わかりやすいかも！手技としては。

[[以下、WiKiより転載。>http://ja.wikipedia.org/w/index.php?title=%E6%9F%93%E8%89%B2_%28%E7%94%9F%E7%89%A9%E5%AD%A6%29&oldid=16287552]]

[[生物学]]において、'''染色'''（せんしょく）とは、特定の生物[[組織 (生物学)|組織]]、[[細胞]]、[[オルガネラ]]などに、特殊な[[色素]]を用いて[[色]]を付ける実験技術のこと。特に、[[顕微鏡]]での観察をより容易にするため、観察に先立って染色が行われることが多い。例えば、組織中の一つの細胞を顕微鏡で観察する場合、そのままでも形態の違いだけから[[結合組織]]中の細胞や、細胞中の[[細胞核]]を見分けることは可能であるが、あらかじめ[[細胞質]]や核を染色すればそれぞれの観察が容易になる。染色の原理には、観察する標本に含まれている特徴的な生体[[分子]]（[[蛋白質|タンパク質]]、[[核酸]]、[[脂質]]、[[炭化水素]]など）に対して、特定の色素が強く結合する性質を利用したものや、特定の[[酵素]]と反応して発色する[[酵素|基質]]を用いたものなどがある。用いる色素が[[蛍光]]色素の場合、特に'''蛍光染色'''と呼ばれる。観察しようとする対象と目的に応じて、さまざまな色素を用いた'''染色法'''が考案され、利用されている。
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染色は生物学や医学のさまざまな分野で幅広く利用されている。[[組織学]]や[[病理学]]の分野では、特定の疾患に伴って起きる、組織や細胞の形態的な変化を観察したり、疾患の指標となる酵素やタンパク質の発現を確認するときなどに染色が用いられ、病気の診断などにも応用されている。[[微生物学]]の分野では、[[グラム染色]]などの染色法が、細菌の同定や形態観察に用いられている。一般的には微視的観察に用いられることが多いが、[[分類学]]や[[発生学]]の分野では、[[透明骨格標本]]の染色など、巨視的観察に用いられることもある。また[[生化学]]の分野では、生体から分離したタンパク質や核酸を[[電気泳動]]で分析するとき、これらの高分子を可視化するためにも利用されている。
&br;
染色は上記のように微視的観察に用いられることが多いが、研究内容によっては巨視的観察に用いられることもある。例えば[[魚類]]の[[分類学]]的研究や[[脊椎動物]]の[[発生学]]的研究において、[[硬骨組織]]や[[軟骨組織]]の形態を詳細に観察する場合がある。そのためにしばしば[[透明骨格標本]]という技術が用いられる。これは[[ホルマリン]]で[[固定_(組織学)|固定]]した小動物の標本を硬骨組織や軟骨組織に特異的に結合する色素で染色し、アルカリ性水溶液やタンパク質分解酵素である程度組織のタンパク質を分解、さらに組織内の水をグリセリンと置換して体内の骨格を外部から観察できるようにしたものである。
&br;
概要として、一般染色法と特異染色法（組織化学的染色法）を説明する。免疫染色（抗体染色）についても特異染色に絡めて触れる。
-単染色
-多重染色
-ネガティブ染色
など、基本的な分類の解説が必要。
in vivo染色はまだマイナーに過ぎるので、わざわざin vitro染色として大別して解説する必要はない。以下の章立ては再検討が必要。

:''in vitro''染色|''in vitro''染色は生きていない細胞や組織に色を付ける。''[[in vitro]]''とは直訳すると「ガラスの中」を意味し、''[[in vivo]]''（生体内）と比較される。単独の染色よりも詳細を明らかにする為、複数の染色法を組み合わせて使うことがある。固定と標本準備の独特な手順と組み合わされて、これら基本的な技術は一貫した、再現性のある[[科学者]]と[[医師]]の検査ツールとして利用できる。'''対比染色'''は見える細胞や主要な染色法で染まっていない細胞へ加えられる。例えばクリスタルバイオレット染色はグラム陽性菌のみを染める[[グラム染色]]である。サフラニン対比染色はグラム陰性菌を同様に識別するために、全ての細胞を染めるために使われる。
:標本|準備の段階は解析方法の様式に左右され、のちの過程の殆どにそれが要求される。'''透過処理'''は細胞の弱い[[界面活性剤]]による処理をしばしば含む。この界面活性剤処理は[[細胞膜]]を溶解し細胞内へ大きな[[色素]]分子を入れる事を可能にする。
:固定|'''[[固定 (組織学)|固定]]'''は細胞や組織の形を可能な限り保存するための数段階からなる。殆どの固定液（化学的な固定）はタンパク質と他の基質の間の[[化学結合]]を生成してそれらの硬さを増す。通常の固定液には[[ホルムアルデヒド]]、[[エタノール]]、[[メタノール]]、そしてまたは[[ピクリン酸]]を含む。組織の欠片は力学的な強さと安定さを増して薄く切り刻むのを容易にするためにパラフィンへ埋め込まれる。
:マウンティング|'''マウンティング'''では通常は観察と解析のために[[スライドガラス]]へサンプルを貼り付け。いくつかの場合では、細胞を直接スライドガラスの上で圧挫して伸展させる。互いに結合せず遊離した細胞（[[血液]]塗抹や[[婦人科]][[擦過細胞塗抹]]の場合）では、検体は直接スライドの上に置かれる。小さな個体や組織はそのままマウントすることがしばしばあり、これはホールマウント (''whole mount'') という。より大きな組織片では、薄い切片を[[ミクロトーム]]を用いて作る。これらの組織片はこうして切片にすることによってマウンティングと検査が可能となる。

*代表的な染色法 [#jaa31139]
その最も単純なものは、スライドガラス上に固定した標本を染色液（色素の溶液）に浸し、過剰な染色液を洗い流した後で観察する。いくつかの染色法では、染色した色素を不溶化するため、洗浄する前に[[媒染剤]]を使用する必要がある。

染色法 - 変更履歴

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